COASTAL POLLUTION MONITORING OF SOUTHERN ITALIAN SITES BY THE MUG ASSAY
Caruso G.*, CrisafiE., Mancuso M.
Istituto per l’Ambiente Marino Costiero (IAMC) – Section of Messina, C.N.R., Messina, Italy - * caruso@ist.me.cnr.it
Abstract
A five-year study was carried out on coastal samples collected from Sicilian and Calabrian areas in order to test the performance of an
enzyme approach in comparison with the immuno?uorescence (IF) and standard culture (FC) methods. The MUG assay was found to be
more indicative of the Escherichia colipopulation, as estimated by IF method, than of the whole faecal coliform group determined by plate
counts. The usefulness of MUG assay for monitoring mean and heavily polluted areas is suggested. 
Keywords: Pollution, bacteria, b-glucuronidase, MUG
Rapp. Comm. int. Mer Médit., 37,2004
269
Introduction
The detection and enumeration of Escherichia coliare of
fundamental importance for the control of waterborne diseases and
the assessment of the microbiological quality of bathing waters (1).
Different reasons support the need for rapid enzymatic methods: real-
time assessment would be ideal for the management of water
resources and the protection of public health; current standard
procedures are labour- and time-consuming and unsuitable for
microbiological monitoring; by the incorporation of synthetic enzyme
substrates into culture media, rapid monitoring for specific bacteria
may be performed, avoiding the need for isolation and confirmation
tests (2). The measurement of the 
ß
-glucuronidase activity rate by
using the 4-methylumbelliferyl-
ß
-D-glucuronide (MUG assay) has
been suggested as an indirect alternative approachto estimate the
presence of E. coli(3). In this paper we report a five-years study
carried out on coastal Mediterranean sites, where the reliability of this
method for the monitoring of naturally contaminated samples has
been tested, in comparison with the direct microscopic count by
immuno?uorescence (4) and culture methods.
Materials and methods
The MUG assay relies on the determination of 
ß
-glucuronidase
activity, an enzyme specific of E. coliand Shigellaspp., another
Enterobacterium closely related to E.coli(2). The fluorogenic
compound 4-methylumbelliferyl-
ß
-D-glucuronide (MUG) is the most
suitable substrate for the determination of the 
ß-
glucuronidase
activity; it is enzymatically cleaved into its ?uorescent product, 4-
methylumbelliferone (MU).
For the enzyme assay, the procedure described by Carusoet al. (3)
was followed: 10 ml aliquots of a concentrated sample were added at
increasing MUG concentrations (from 5 to 50 
µ
M, Sigma) and
incubated at 44°C for 3h. Fluorescence intensity measurements were
performed at an excitation of 365 nm and 445 nm emission
wavelength (3). Data were expressed as the maximum rate of
hydrolysis (V
max
) of MUG (in nmol MU released per 100 ml per h),
which provides a measure of the “potential” 
ß
-glucuronidase activity
present in each sample. 
Since 1996, a total of 197 samples were collected from coastal
Sicilian and Calabrian sites and analysed by the MUG assay; faecal
coliform (FC) and E.colicounts were also performed, respectively, by
the membrane filtration method on m-FC agar plates and by the
microscopic ?uorescent antibody (IF) method (4).
Results 
The bacterialcounts obtained on samples analysed showed that
areas examined differed from each other in their pollution levels; the
lowest faecal contamination was measured in Milazzo, followed by
Gioia Tauro and Palermo Gulf, where the average values of faecal
coliforms and E.coliwere less than 2.38x102CFU 100ml-1 and
2.58x104cells 100 ml-1, respectively. The Straits of Messina suffered
a heavier microbial pollution than the other sites; here, FC and E.coli
reached a maximum of 6.13x104CFU and 1.87x105cells 100ml-1. 
ß
-
glucuronidase activity values ranged from 1.30 to 5.57 nmol
MU/100ml/h.
The statistical analysis of the logarithmic-transformed enzymatic
values, plotted versus the immuno?uorescence and plate count
showed that enzyme values correlated with IF values, and therefore
with E.colidensity, more significantly (R
2
=0.1862, n=197, P<0.05)
than with FC values (R
2
=0.1244, n=197, P<0.05). In order to assay
whether the response of the enzymatic assay was affected by the
concentration of faecal coliform bacteria, samples were divided into
different groups according to their FC concentrations. Theregression
analysis showed that at high pollution levels, where FC reached values
over 10
CFU/100ml, the relationship obtained between FC and MUG
wasmore significant (R
2
=0.5774, n=79, P<0.05) than that found
between FC and IF, while at low pollution levels (FC counts less than
10
3
CFU/100ml), a better relationship between FC and IF was
obtained (R
2
=0.1401, n=57, P<0.05), as compared to that between FC
and MUG (R
2
=0.1291, n=57, P<0.05). From 14 to 91% of the
variance in the activity rates depended on the variations in the E.coli
concentration, while a lower percentage (13 to 58%) of the variance
in activity rates was explained by the variations in FC counts. 
Discussion
Results show that the MUG assay represents a practical approach
and can be seen as an alternative to standard culture methods to assess
the microbiological quality of seawaters. It may be applied for early
warning of faecal pollution episodes, making results available quickly
(less than 4 h) and with reduced costs. The highly significant
relationship found between log-transformed MUG and IF values
suggested thathe enzymatic method is more specific for E.colithan for
faecal coliforms.A possible explanation is also that the enzyme
method is able to detect both viable and viable-but non-culturable
(VBNC) cells, still metabolically active, which are estimated by IF
only. This may lead to a more accurate estimate of the actual bacterial
abundance (5). For heavily polluted samples, the enzymatic values
were related more significantly than IF to standard counts, while for
less contaminated samples the statistical relationship between IF and
FC values was more significant than that found between MUG and
FC. We may assume, in fact, that under highly polluted conditions, a
high proportion of cells retained their metabolic activity due to the
high organic matter availability, while in oligotrophic waters the
greater presence of injured/damaged bacteria could account for the
poor relationship between MUG and FC (5). Evaluations of metabolic
activity may sometimes be different from abundance data,
nevertheless the good correlation between the enzyme activity and E.
colivalues supports the determination of 
ß
-glucuronidase activity rate
as an indirect measure of the presence of E.coliand the application of
the MUG assay to the detection of this microorganism in marine
waters. 
Achnowledgements
This study has been funded by the Italian MIUR (Ministry for
University and Scientific Research SAM – Cluster 10 project).
References
1-Bonadonna L., Chiaretti G., Coccia A.M., and Semproni M., 1997.
Valutazione comparativa di procedure analitiche per il rilevamento di
Enterobacteriaceaein acque marine costiere. Rapporti ISTISAN,97/3: 
1-42. 
2-Hartman P.A., 1989. The MUG (Glucuronidase) test for Escherichia
coliin food and water. Pp. 290-308. In:Balows A., Tilton R.C., Turano A.
(eds.) Rapid methods and automation in microbiology and immunology.
Brixia Academic Press, Brescia. 
3-Caruso G., CrisafiE., and Mancuso M., 2002. Development of an
enzyme assay for rapid assessment of Escherichia coliin seawaters. 
J. Appl. Microbiol.,93: 548-556. 
4-Caruso G., Zaccone R., and CrisafiE., 2000. Use of the indirect
immunofluorescence technique for detection and enumeration of
Escherichia coliin seawater samples. Lett. Appl. Microb., 31: 274-278.
5-George I., Petit M., Theate C., and Servais P., 2001. Use of rapid
enzymatic assays to study the distribution of faecal coliforms in the Seine
river (France). Water Sci. Tech., 43: 77-80.