EARLY JUVENILE DEVELOPEMENT OF THE CUTTLEFISH (SEPIA OFFICINALISL.)  

AND SQUID (LOLIGO VULGARISL.)

V. Kožul*, P. Tutman, N. Glavic, B. Skaramuca and J. Bolotin

Institute of Oceanography and Fisheries, Laboratory Dubrovnik, Croatia - * kozul@labdu.izor.hr

Abstract

Juvenile cuttlefish hatched in the laboratory were reared for 15 days. Hatching was not simultaneous and was completed after 5 days. The

cuttlefish were fed mysids. As with the cuttlefish, juvenile Loligohatched in the laboratory. Newly hatched specimens were fed with

Brachionus plicatilis.

Keywords: Early development, cuttlefish, squid

Rapp. Comm. int. Mer Médit., 37,2004

381

Introduction

Cephalopod research, especially cuttlefish Sepia officinalishas

been carried out for many years (1-3). Due to fast growth rates, high

food conversion (4, 5) high market price, and good adaptability to

captive conditions, the cuttlefish is a very interesting species for

mariculture and for biomedical research (6). In comparison with other

cephalopods, cuttlefish eggs are relatively large and hatchlings are

similar to adult specimens (1, 3). Another cephalopod that is

interesting for mariculture and important for fishery resources is

squid, Loligo vulgaris. Until recently, some research had been done

on reproduction and rearing (7-14). 

Materials and methods

Specimens of cuttlefish were captured in the Malostonski Bay,

70km northwest of Dubrovnik. Cuttlefish for the broodstock (20 ind.)

were collected throughout July 2002. The sex ratio was 1:1.

Specimens weighed from 95-130 g, and the mantle length was 

9-11.1 cm. The adaptation time was very short. During the first 6

hours, specimens separated into couples to different parts of the

rearing tanks. Broodstock were cultured in ambiental conditions, with

a temperature range of 23.3-27.6 ºC, salinity 36.4-38.2 ‰ and

dissolved oxygen 6.5-6.7. The broodstock was feed with sardines.

Adaptation to this food was fast. After a few days, females started to

attach eggs onto a plastic net. Eggs were transferred for incubation in

100 l tanks. Small and damaged eggs were separated. Young cuttlefish

were cultured in incubation tanks and measured until the 15

th

day of

life. Hatchlings were feed with live mysid shrimp.

On April 30

th

, 2002, 22 strands with squid eggs were collected in

the Malostonski Bay near Dubrovnik. Strands were placed in 300 l

tanks with ambiental conditions. There was a constant ?ow of 50-70%

seawater daily through a 0.5 mm mesh net, temperature ranged from

17.3-20.6 ºC, salinity 36.2-37.9‰ and dissolved oxygen 6.7-6.9. The

paralarvae were measured until the 8

th

day of life and were fed with

Brachionus plicatilisand Artemia salina.

The cuttlefish and squid experiments were carried out under

artificial photoperiods (12:12 h, 2000 lux). The water was gently

aerated from the bottom of the tanks. The tanks were cleaned by

siphoning once daily.

Results

The reproductive behavior of cuttlefish was more evident in males.

They swam side-by-side near females with intense body colors. When

male and female pairs formed, a head-to-head meeting was noted.

Four groups of eggs were attached to different parts of the tanks. The

average number of attached eggs in a single position was 150-250.

Females attached eggs in the same place a few times during 2-3 days.

Hatching started after 22 days of incubation and lasted 4 days. After

hatching, young cuttlefish were on the bottom of tanks. The average

mantle length was 5.44±0.75 mm. After 15 days of rearing, the mean

mantle length was 7.11±0.62 mm. In each of the three rearing tanks,

there were 300 hatched cuttlefish. The first day after hatching, 2000-

3000 mysids were added to each tank and feeding started at once.

Cuttlefish selected prey up to 10 cm visual distance. The rest of the

uneaten food was rejected.

The incubation period of squid eggs lasted 22 days. After the first

day of hatching, 15% of paralarvaes hatched. The largest number of

hatched paralarvaes was on the 3

rd

day (50%). After four days, all 

the paralarvaes hatched. The mean dorsal mantle length was

2.95±0.33 mm. The mean mantle length was 3.46±0.28 mm eight

days after hatching. Paralarvaes chose prey up to 10-15 mm in front

of the visible area around the head. 

Discussion

Since 40% of the cuttlefish in the broodstock spawned and attached

eggs in tanks, it may be concluded that S. officinalisadapt easily to

captive conditions. In good rearing conditions, it is possible to get two

cultures per year, during the summer and winter seasons. Cuttlefish

eggs are relatively large. Newly hatched cuttlefish are similar to adult

specimens (1). In comparison to squid paralarvae, they are much

larger and need larger prey that can be located at greater visual

distances. When they don’t hunt mysids, juvenile cuttlefish are on the

bottom, while squid paralarvae prefer the water column. During the

rearing period of 15 and 7 days, neither species showed marked

growth, but the first live food was very easily accepted. 

S. officinalisand L. vulgarisare excellent candidates for aqua-

culture in Croatia. They are a targeted fishing species of cephalopodes

due to good prices. Both species grow fast, reaching adult size and

reproducing quickly. They adapt well to different diets and there is

little difficulty in switching them from live to dead food.

References

1-Wales, M.J. 1958. Factors affecting reaction to Mysis by newly hatched

Sepia. Behaviour, 13: 96-111.

2-Boletzky, S.v. and R.T.Hanlon. 1983. A review of the laboratory

maintenance, rearing and culture of cephalopod molluscs. Mem. Nat. Mus.

Victoria, 44: 147-187. 

3-Hanlon R.T. and J.B. Messeger. 1988. adaptive coloration in young

cuttlefish (Sepia officinalisL.) the morphology and development of body

patterns and their relation to behaviour. Philos. Trans. R. Soc.B320: 437-

487.

4-Forsythe, J.W. and W.F. Van Heukelem. 1987.Growth. In: Cephalopod

Life Cicles. Vol 2. Ed. P.R. Boyle, pp. 135-155. Academic press. London.

5-Lee, P.G.1994. Nutrition of cephalopods: fuelling the system. Marine

and Freshwater Behavior Physiology,25: 35-51.

6-Forsythe, J.W., Hanlon R.T. and R. DeRusha. 1991. Pilot large-scale

culture of sepia in biomedical research. Pp. 313-323. In.: The Cuttlefish,

E. Boucaud-Camou (ed). Centre de Publication de l’Université de Caen,

France. 

7-Hurley, A.C. 1976. Feeding behaveiour, food consumption, growth and

respiration of the squid Loligo opalescens raised in the laboratory. Fish.

Bull.,74(1): 176-182. 

8-Turk, P.E., Hanlon, R.T., Bradford, L.A. and W.T. Yang. 1986. Aspects

of feeding, growth and survival of the European squid Loligo vulgaris

Lamarck, 1798, reared through the early growth stages. Vie et Milleu,

36(1): 9-13.

9-Young, R.E. and R.F. Herman. 1988. “Larva”, “paralarva” and

“subadult” in cephalopod terminology. Malacology, 29: 201-208.

10-Rocha F. and A. Guerra. 1996. Sings of an extended and intermittent

terminal spawning in the squids Loligo vulgarisLamarck and Loligo

forbesiSteenstrup (Cephalopoda: Loliginidae). J. Mar. Biol. Ass. U.K.

207(1-2): 177-189.

11-Lopes SS. Coelho ML. and J. P. Andrade. 1997. Analysis of oocyte

development and potential fecundity of the squid Loligo vulgarisfrom the

waters of southern Portugal. J. Mar. Biol. Ass. U.K., 77(3): 903-906.

12-Hanlon R.T. 1998.Mating systems and sexual selection in the squid

Loligo: How might commercial fishing on spawning squids affect them?

Cal. CoFi. Rep.,39: 92-100.

13-Raya C.P. Balguerias E. Fernandez-Nunez M.M. and G.J. Pierce.

1999. On reproduction and age of the squid Loligo vulgarisfrom the

Saharan Bank (north-west African coast). J. Mar. Biol. Ass. U.K.,79(1):

111-120.

14-Mladineo, I., Valic, D. and M. Jozic.2003. Spawning and early

development of Loligo vulgarisLamarck, 1798, under experimental

conditions. Acta Adriat., 44(1): 77-83.