mullet caught from sites 1,2,3,4 and 11 suggests that these sites are
highly contaminated with carcinogenic PAHs and/or PCBs and possi-
bly other toxic compounds. These sites are prone to the alarming patho-
logical changes at the population and community leve 
.
References
1- Payne J.F.et al., 1987. Review and perspective on the use of mixed
function oxygenase enzymes in biological monitoring. Comp. Biochem.
Physiol.,86C: 233-245.
2- Buhler D.R. and Wang-Buhler J.L.,1998. Rainbow trout Cytochrome
P450s: purification,  induction, and role in environmental monitoring.
Comp. Biochem. Physiol., 121C: 107-137.
3- Balkas I.T.et al,1992. Izmir Bay wastewater management project-
economical considerations. Water Sci. Technol., 26: 2613-2616.
4- Arinc E and Sen A., 1999. Hepatic cytochrome P4501A1 and 7-
ethoxyresorufin o- deethylase induction in mullet and common sole as an
indicator of toxic organic pollution in Izmir Bay,Turkey.Marine Env.
Res.,48: 147-160.
5- Arinc E, Sen A and Bozcaarmutlu A., 2000. Cytochrome P4501A and
associated mixed function oxidase induction in fish as a biomarker for
toxic carcinogenic pollutants in aquatic environment. PureAppl.
Chem.,72: 985-994
6-Arinc E , Kocabiyik S and Su . 2001. Induced CYP1A mRNA, protein
and catalytic activity in the liver of feral fish Leaping Mullet, Lisa
saliens,Comp. Biochem. Physiol C Toxicol Pharmacol., 128: 281-290.
Rapp. Comm. int. Mer Médit., 36,2001
180
Figure 2. CYP1A1 protein (“A”) and CYP1A1 mRNA(“B”) lev-
els in liver microsomes of leaping mullet caught from the sev-
eral sites in Izmir Bay.
Numbers below the bars correspond to the collection sites given in
the map in Figure 1. The bar graph “A” illustrates arbitrary densit-
ometric units (ADU) obtained from Western blots of liver micro-
somes. Quantitation of CYP1A1 mRNAbands from Northern blots
wereobtainedbyusingscanningdensitometerandalso
Introduction
Au cours de ce travail, nous avons pu voir que la survie de
P.aeruginosaest assez longue comparée à celle des eubactéries.
L’adaptation de ce germe aux conditions marines se fait par modifi-
cation des caractères morphologiques (réduction de la taille, diversi-
fication de la formes des bactéries) et modification des caractères cul-
turaux : apparition des colonies rugueuses ou lisses à pigment jaune
localisé au niveau des colonies ainsi que des colonies oranges et
noires.
Matériel et méthodes
Préparation inoculation et incubation de la souche étudiée : 
La souche de référence de Pseudomonas aeruginosaATCC 27853
est incubée pendant 6 à 12 ans dans l’eau de mer plus du sédiment
marin. Elle est cultivée à 37 °C pendant 24 heures sur une gélose
ive. Elle est par la suite récupérée dans de l'eau physiologique et
inoculée dans un ?acon Erlen meyer renfermant 200 ml d'eau de mer
é 
.
Milieux de culture utilisés: 
Gélose nutritive (GN), Bouillon nutritive (BN),Gélose nutritive
préparée à l'eau de mer (GNEM), Mueller hinton (MH), King A pré-
parée à l'eau de mer (KAEM). L'étude des caractères biochimiques
est faite sur des galeries Api 20 NE.
Résultats
1) Modification des caractères culturaux de P . aeruginosa au cours de
son incubation en eau de mer.
P. aeruginosaincubé six ans dans de l’eau de mer additionné de
sédiment marin et incubé trois jours dans du BN donne :
- des colonies blanches avec centre jaunâtre sur GN qui gardent leur
aspect sur KAEM, des grandes colonies jaunes et blanches et
d’autres naines.
- des colonies de taille variable entre 1 et 2 mm de couleur blanche
avec un anneau transparent au milieu qui, par alternance de repi-
quages sur BN, GN et MH donnent des colonies oranges, blanches et
d’autres jaunes rugueuses. Ces dernières donnent à la suite de
plusieurs repiquages sur GN et KAEM des colonies blanches
rugueuses qui deviennent jaunes après 48 heures de leur apparition
sur ce dernier milieu et des colonies blanches sur GNEM.
P. aeruginosaincubé dix ans dans de l’eau de mer additionnée de
sédiment marin ne donne pas de colonies après incubation de trois
jours dans du BN et 24 heures sur GN mais c’est après environ une
quinzaine de jours que les colonies naines poussent. Incubé trois
mois dans du BN P. aeruginosadonne des formes très diversifiées
avec des pigments orange et jaune. Les colonies orangées, au début
transparentes donnent par vieillissement sur GN (2mois) des colonies
noires bombées, desséchées incrustées dans la gélose. Dans un milieu
liquide, elles donnent des amas indissociables. Une fois ense-
mencées, ces dernières donnent par repiquage sur GN des colonies
transparentes puis orangés de tailles plus ou moins grande. Ces
mêmes colonies ne donnent pas les mêmes profils biochimiques sur
Api 20NE mais elles présentes la même résistance aux antibiotiques.
2) Modification des caractères biochimiques :
L'étude des ces modifications sur des galeries Api 20 NE, nous a
permis de voir que P. aeruginosaau cours de son incubation en eau